Личный кабинет Регистрация
ISSN 2413-0346 (Print)
ISSN 2413-0354 (Online)

Аннотация

Изучено 139 культур быстрорастущих НТМБ комплекса M. chelonae (90 – M. chelonae и 49 – M. abscessus) методом
серийных микроразведений в тест-системе Sensititre RAPMyco. Установлено, что M. abscessus были чаще устойчивыми к большинству исследованных химиопрепаратов, что в первую очередь подтверждено при статистической обработке данных о
числе резистентных штаммов этих видов и анализом кривых выживания Каплана-Мейера. Следует подчеркнуть, что эти данные часто совпадают, а часто отличаются от приведенных в других исследованиях. Это объясняется в первую очередь тем, что в разных регионах мира имеются существенные особенности циркулирующих между неживой природой, животными и человеком НТМБ (спонтанные мутации, частота заболеваний с применением разных видов лечения и т.д.).
Ключевые слова: быстрорастущие нетуберкулезные микобактерии, M. chelonae, M. abscessus, лекарственная чувствительность



Об авторах



Макарова Марина Витальевна – ведущий научный сотрудник отдела проблем лабораторной диагностики туберкулеза
и патоморфологии ГБУЗ города Москвы «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом
Департамента здравоохранения города Москвы», доктор биологических наук
Адрес: 107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10
Тел. + 7 (916) 688-98-25, факс + 7 (495) 964-86-37
e-mail: makarova75@yandex.ru

Хачатурьянц Елена Николаевна – врач-бактериолог Централизованной бактериологической лаборатории, научный
сотрудник отдела проблем лабораторной диагностики туберкулеза и патоморфологии ГБУЗ города Москвы «Московский
городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»
Адрес: 107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10
Тел. + 7 (499) 268-70-33
e-mail: hen65b@mail.ru

Краснова Мария Александровна – ведущий научный сотрудник отдела лабораторной диагностики туберкулеза и
патоморфологии ГБУЗ города Москвы «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом
Департамента здравоохранения города Москвы», кандидат медицинских наук
Адрес: 107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10
Тел. + 7 (495) 603-30-33
e-mail: dna77@mail.ru

Сафонова Светлана Григорьевна – заведующая отделом лабораторной диагностики туберкулеза и патоморфологии
ГБУЗ города Москвы «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента
здравоохранения города Москвы», доктор биологических наук
Адрес: 107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10
Тел. + 7 (495) 603-30-33

Хахалина Анастасия Александровна – ведущий научный сотрудник отдела лабораторной диагностики туберкулеза и
патоморфологии ГБУЗ города Москвы «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом
Департамента здравоохранения города Москвы», кандидат биологических наук
Адрес: 107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10
Тел. +7 (495) 603-30-33
e-mail: nastec@bk.ru

Литвинов Виталий Ильич – научный руководитель ГБУЗ города Москвы «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы», доктор медицинских наук, профессор, академик РАН
Адрес: 107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10
Тел. +7 (495) 268-04-15
e-mail: mnpcbtlv@yandex.ruм

Список литературы

1. Лабораторные исследования при туберкулезе / Под ред. В.И. Литвинова, А.М. Мороза. – М.: МНПЦБТ, 2013. – 342 с.
2. Литвинов В.И., Богородская Е.М., Борисов С.Е. Нетуберкулезные микобактерии, микобактериозы. – М.: МНПЦБТ, 2014. – 254 с.
3. Abuali M., Katariwala R., LaBombardi V. A comparison of the Sensititre® MYCOTB panel and the agar proportion method for the susceptibility testing
of Mycobacterium tuberculosis // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. – 2011. – Vol. 31. – N. 5. – P. 835-839.
4. Akram S., Bhimji S. Mycobacterium Chelonae. – Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2018.
[Электронный доступ]. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK430806/ (Дата обращения 12.04.2018).
5. Benwill J., Wallace R. Mycobacterium abscessus: challenges in diagnosis and treatment // Curr. Opin. Infect. Dis. – 2014. – Vol. 27. – N. 6. – P. 506-10.
6. Brown-Elliott B., Nash K., Wallace R. Antimicrobial susceptibility testing, drug resistance mechanisms, and therapy of infections with nontuberculous
mycobacteria // Clin. Microbiol. Rev. – 2012. – Vol. 25. – N. 3. – P. 545-582.
7. Brown-Elliott B., Philley J. Rapidly growing Mycobacteria // Microbiol. Spectr. – 2017. – Vol. 5. – N. 1. doi: 10.1128/microbiolspec.TNMI7-0027-2016.
8. Cavusoglu C., Gurpinar T., Ecemis T. Evaluation of antimicrobial susceptibilities of rapidly growing mycobacteria by Sensititre RAPMYCO panel //
New. Microbiol. – 2012. – Vol. 35. – N. 1. – P. 73-76.
9. Chazel M., Marchandin H., Keck N. et al. Evaluation of the SLOMYCO Sensititre® panel for testing the antimicrobial susceptibility of Mycobacterium marinum
isolates // Ann. Clin. Microbiol. Antimicrob. – 2016. – Vol. 15. – P. 30.
10. Choi H., Kim S., Kim D. et al. Clinical Characteristics and Treatment Outcomes of Patients with Acquired Macrolide-Resistant Mycobacterium abscessus Lung
Disease //Antimicrob. Agents. Chemother. – 2017. – Vol. 61. – N. 10. – pii: e01146-17

11. Christianson S., Grierson W., Kein D. et al. Time-to-Detection of inducible macrolide resistance in Mycobacterium abscessus subspecies and its association
with the erm (41) sequevar // PLoS One. – 2016. – Vol. 11. – Vol. 8. – e0158723.
12. CLSI. Susceptibility testing of mycobacteria, nocardiae, and other aerobic actinomycetes: approved standard: 2nd Ed. CLSI document M24-A2. –
Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute, 2011. [Электронный ресурс]. URL: https://www.clsi.org/media/1463/m24a2_sample.pdf.
13. Cowman S., Burns K., Benson S. et al. The antimicrobial susceptibility of non-tuberculous mycobacteria // J. Infect. – 2016. – Vol. 72. – N. 3. – P. 324-31.
14. Griffith D., Aksamit T., Brown-Elliott B. et al. An official ATS/IDSA statement: diagnosis, treatment, and prevention of nontuberculous mycobacterial diseases
// J. Respir. Crit. Care Med. – 2007. – Vol. 175. – N. 4. – P. 367-416.
15. Griffith D. Nontuberculous mycobacterial lung disease // Curr. Opin. Infect. Dis. – 2010. – Vol. 23. – N. 2. – P. 185-90.
16. Griffith D. Mycobacterium abscessus subsp abscessus lung disease: ‘trouble ahead, trouble behind…’// F1000Prime. Rep. – 2014. – Nov 4; 6:107. doi: 10.12703/
P6-107.
17. Hall L., Jude K. P., Clark S.L. et al. Evaluation of the Sensititre MycoTB Plate for susceptibility testing of the Mycobacterium tuberculosis сomplex against
first- and second-line agents //J. Clin. Microbiol. – 2012. – Vol. 50. – N. 11. – P. 3732-3734.
18. Han X., Dé I., Jacobson K. Rapidly growing mycobacteria: clinical and microbiologic studies of 115 cases // Am. J. Clin. Pathol. – 2007. – Vol. 128. –
N. 4. – P. 612-21.
19. Hatakeyama S., Ohama Y., Okazaki M. et al. Antimicrobial susceptibility testing of rapidly growing mycobacteria isolated in Japan // BMC Infect. Dis. –
2017. – Vol. 17. – N. 1. – P. 197. doi: 10.1186/s12879-017-2298-8.
20. Heifets L. Drug susceptibility in the chemotherapy of mycobacterial infections. – CRC Press. Boca Raton Ann Arbor Boston. London. – 2000. – 212 p.
21. Heifets L. Mycobacterial infections caused by nontuberculous mycobacteria // Semin. Respir. Crit. Care Med. – 2004. – Vol. 25. – N. 3. – P. 283-295.
22. Huang Y., Liu M., Shen G. et al. Clinical outcome of Mycobacterium abscessus infection and antimicrobial susceptibility testing // J. Microbiol. Immunol.
Infect. – 2010. – Vol. 43. – N. 5. – P. 401-406.
23. Kasperbauer S., de Groote M. The treatment of rapidly growing mycobacterial infections // Clin. Chest. Med. – 2015. – Vol. 36. – N. 1. – P. 67-78.
24. Kim H., Lee S., Kim B., Kook Y. Allele-specific duplex polymerase chain reaction to differentiate Mycobacterium abscessus subspecies and to detect highly
clarithromycin-resistant isolates // Indian. J. Med. Microbiol. – 2016. – Vol. 34. – N. 3. – P. 369-374.
25. Koh W., Stout J., Yew W. Advances in the management of pulmonary disease due to Mycobacterium abscessus complex// Int. J. Tuberc. Lung. Dis. – 2014. –
Vol. 18. – N. 10. – P. 1141-1148.
26. Lee S., Yoo H., Kim S. et al. The drug resistance profile of Mycobacterium abscessus group strains from Korea // Ann. Lab. Med. – 2014. – Vol. 34. –
N. 1. – P. 31-37.
27. Li Y., Tong X., Xu H. et al. Prevalence and Antimicrobial Susceptibility of Mycobacterium abscessus in a General Hospital, China // Biomed. Environ. Sci. –
2016. – Vol. 29. – N. 2. – P. 85-90. DOI: 10.3967/bes2016.009.
28. McShane P., Glassroth J. Pulmonary Disease Due to Nontuberculous Mycobacteria: Current State and New Insights // Chest. – 2015. – Vol. 148. –
N. 6. –1517-1527.
29. Maurer F., Bruderer V., Ritter C. et al. Lack of antimicrobial bactericidal activity in Mycobacterium abscessus //Antimicrob. Agents. Chemother. – 2014. –
Vol. 58. – N. 7. – P. 3828-3836.
30. Nagano H., Kinjo T., Nei Y. et al. Causative species of nontuberculous mycobacterial lung disease and comparative investigation on clinical features
of Mycobacterium abscessus complex disease: A retrospective analysis for two major hospitals in a subtropical region of Japan // PLoS One. – 2017. – Vol. 12. –
N. 10. – e0186826.
31. Nie W., Duan H., Huang H. et. al. Species identification and clarithromycin susceptibility testing of 278 clinical nontuberculosis mycobacteria isolates //
Biomed. Res. Int. – 2015. – P. 506-598. DOI 10.1155/2015/506598.
[Электронный документ]. URL: https://doaj.org/article/f93e475b0fcb4d7ab9d22bd87dab233d. (Дата обращения 12.04.2018).
32. Pang H., Li G., Wan L. et al. In vitro drug susceptibility of 40 international reference rapidly growing mycobacteria to 20 antimicrobial agents //
Int. J. Clin. Exp. Med. – 2015(а). – Vol. 8. – N. 9. – P. 15423-15431.
33. Pang H., Li G., Zhao X. et al. Drug Susceptibility Testing of 31 Antimicrobial Agents on Rapidly Growing Mycobacteria Isolates from China //
Biomed. Res. Int. – 2015(b). – DOI 10.1155/2015/419392. [Электронный документ]. URL: https://doaj.org/article/7f1acb2433bf4ea09ca68278c234a09b.
(Дата обращения 12.04.2018).
34. Richter E., Andres S., Hillemann D. Current microbiological methods in the investigation of mycobacteria // Pneumologie. – 2015. – Vol. 69. –
N. 5. – P. 276-281.
35. Set R., Rokade S., Agrawal S., Shastri J. Antimicrobial susceptibility testing of rapidly growing mycobacteria by microdilution – experience of a tertiary care
centre // Indian. J. Med. Microbiol. – 2010. – Vol. 28. – N. 1. – P. 48-50.
36. Stout J., Koh W., Yew W. Update on pulmonary disease due to non-tuberculous mycobacteria // Int. J. Infect. Dis. – 2016. – Vol. 45. – P. 123-134.
37. Tortoli E. Clinical manifestations of nontuberculous mycobacteria infections // Clin. Microbiol. Infect. – 2009. – Vol. 15. – N. 10. – P. 906-910.
38. Tortoli E., Kohl T., Brown-Elliott B. et al. Mycobacterium abscessus, a taxonomic puzzle // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. – 2017. – Vol. 8. – N. 11. – P. 18070-18081.
39. van Ingen J., Boeree M., van Soolingen D. et al. Resistance mechanisms and drug susceptibility testing of nontuberculous mycobacteria //
Drug Resist. Updat. – 2012. – Vol. 15. – N. 3. – P. 149-161.
40. van Ingen J., Kuijper E. Drug susceptibility testing of nontuberculous mycobacteria // Future Microbiol. – 2014. – Vol. 9. – N. 9. – P. 1095-1110.
41. van Ingen J. Microbiological diagnosis of nontuberculous mycobacterial pulmonary disease // Clin. Chest. Med. – 2015(a). – Vol. 36. – N. 1. – P. 43-54.
42. van Ingen J. Treatment of pulmonary disease caused by non-tuberculous mycobacteria // Lancet. Respir. Med. – 2015(b). – Vol. 3. – N. 3. – P. 179-180

43. Wallace R. Diagnostic and therapeutic consideration in patients with pulmonary disease due to the rapidly growing mycobacteria //
Semin. Respir. Infect. – 1986. – Vol. 1. – N. 4. – P. 230-233.
44. Woods G. Susceptibility testing for mycobacteria // Clin. Infect. Dis. – 2000(a). – Vol. 31. – N. 5. – P. 1209-1215.
45. Woods G., Bergmann J., Witebsky F. et al. Multisite reproducibility of Etest for susceptibility testing of Mycobacterium abscessus, Mycobacterium chelonae,
and Mycobacterium fortuitum // J. Clin. Microbiol. – 2000(b). – Vol. 38. – P. 656-661.
46. Yamane N., Onaga S., Saitoh H. et al. Multicenter evaluation of a newly developed microdilution test, broth MIC NTM to determine minimum inhibitory
concentrations of antimicrobial agents for nontuberculous mycobacteria // Rinsho. Byori. – 2002. – Vol. 50. – N. 4. – P. 381-391.
47. Yang S., Hsueh P., Lai H. et al. High prevalence of antimicrobial resistance in rapidly growing mycobacteria in Taiwan // Antimicrob. Agents. Chemother. –
2003. – Vol. 47. – N. 6. – P. 1958-1962.
48. Yano Y., Kitada S., Mori M. et al. Pulmonary disease caused by rapidly growing mycobacteria: a retrospective study of 44 cases in Japan // Respiration. –
2013. – Vol. 85. – N. 4. – P. 305-311.
49. Zelazny A., Root J. Cohort study of molecular identification and typing of Mycobacterium abscessus, Mycobacterium massiliense, and Mycobacterium
bolletii // J. Clin. Microbiol. – 2009. – Vol. 47. – N. 7. – P. 1985-1995.